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ISSN : 1598-5504(Print)
ISSN : 2383-8272(Online)
Journal of Agriculture & Life Science Vol.49 No.1 pp.103-113
DOI : https://doi.org/10.14397/jals.2015.49.1.103

Changes of Serum Electrolytes and hematological Profiles in Yorkshire at a High ambient Temperature

Ki Hyun Kim, Kwang Sik Kim, Jo Eun Kim, Kuk-Hwan Seol, Joon Ki Hong, Young Hun Jung, Jun Cheol Park, Young Hwa Kim*
National Institute of Animal Science, Rural Development Administration
Corresponding author : Young Hwa Kim, Tel: +82-41-580-3446, yhkims@korea.kr
August 21, 2014 November 24, 2014 November 24, 2014

Abstract

This study was performed to investigate the changes of serum electrolytes and hematological profiles in Yorkshire at a high ambient temperature. A total of 10 Yorkshires (73 days old; 40.6±1.4 BW kg) were housed in individual pens and were reared under the environment of typical summer climate in Korea (from 24 July to 4 September, 2013). Growth performance was determined every week and blood samples were collected every second weeks from the jugular vein. The average temperature was the highest at third week (28.6°C), and the maximum temperature (32.1°C) was observed in fourth week of entire study period. Growth performance was decreased by heat stress after the first 3 week. Although the serum concentration of sodium (P<0.01) and chloride (P<0.05) ions were significantly increased at 6 week, serum pH and osmolality did not be affected by high temperature. Neutrophil (NE, P<0.05) and monocyte (MO, P=0.057) levels in blood were increased at 6 week. Hemoglobin (Hb, P<0.05) and mean corpuscular hemoglobin concentration (MCHC, P<0.001) were decreased at 4 and 6 week. Serum total cholesterol (P<0.01), total protein (P<0.001) and blood urea nitrogen (P<0.01) were significantly increased at 4 and 6 week, but serum glucose (P<0.05) concentration was significantly decreased at 6 week. This study certified that the physiological, biochemical, and hematological changes in pig take place at summer season in Korea. The present study’s results can be utilized as base line data for development of stress reduction techniques in pork industry.


고온환경에서 돼지의 혈액 내 전해질 및 혈액학적 성분의 변화

김 기현, 김 광식, 김 조은, 설 국환, 홍 준기, 정 영훈, 박 준철, 김 영화*
농촌진흥청 국립축산과학원

초록

본 연구는 고온 환경에서 Yorkshire 품종의 혈액 내 전해질과 혈액학적 성분의 변화를 조사하기 위 하여 실시하였다. 73 일령(BW 40.6±1.4 kg)의 Yorkshire종 10두를 공시하여 개별 pen에 1두씩 배치 하였다. 시험기간은 한국에서 폭염이 시작되는 2013년 7월 24일부터 동년 9월 4일까지 6주간 실시하였 다. 시험기간 중 평균온도가 가장 높은 시기는 시험 3주차(28.6°C)였으며, 최고온도는 시험 4주(32.1°C) 에 관찰되었다. 일당증체량은 온도가 가장 높았던 시험 3주차부터 감소하는 경향으로 나타났다. 혈청 내 pH와 삼투압은 시험기간 동안 유의적인 변화가 관찰되지 않았다. 나트륨이온 (P<0.01)과 염소이온 (P<0.05)의 농도는 시험 6주에 유의적으로 증가하였다. 일반혈액검사 분석 결과에서 혈액 내 호중구 (P<0.05)와 단핵구(P=0.057)의 수준은 시험 6주에 증가하고, 헤모글로빈과 평균 적혈구 혈색소 농도는 시험 4주와 6주에 감소하는 것으로 관찰되었다(P<0.05). 혈액생화학 분석에서는 총 콜레스테롤 (P<0.01), 총 단백질(P<0.001)과 혈중 요소태 질소(P<0.01)의 농도가 4주와 6주에 높아지는 것으로 관 찰되었으며, glucose 농도는 6주에 유의적으로 낮아졌다(P<0.05). 본 연구의 결과는 한국의 여름철 폭 염기간 동안 돼지의 체내에서 생리생화학적, 혈액학적 변화가 어떻게 변하는지에 대한 기초정보를 제시 하며, 이러한 정보는 혹서기 고온 스트레스로 인한 돼지 생산성저하 방지 기술을 개발하는 데에 기초자 료로 활용될 수 있을 것으로 사료된다.


    Rural Development Administration
    PJ00997102

    I.서론

    우리나라와 같이 사계절이 뚜렷한 국가에서 여름 철의 고온다습한 환경은 축산업에 있어서 막대한 비 용손실을 초래한다. 특히, 돼지의 경우 생리적으로 고온 스트레스에 민감하기 때문에 타 축종에 비해 피해가 크다. 미국의 양돈산업에 있어서 계절적 요 인으로 발생하는 고온 스트레스는 약 3억 달러의 경 제적 손실을 가져오는 것으로 보고되었다(St-Pierre et al., 2003). 고온 환경으로 인한 경제적 손실을 최소화하기 위해 수많은 연구들이 진행 중이다.

    고온 환경에 노출되면 음수량이 증가하고(Waltz et al., 2014), 생리적으로 체온을 조절하기 위해 호 흡량이 증가한다(Pearce et al., 2013). 이러한 돼 지의 생리적 반응은 혈관계 체액의 양과 흐름에 영 향을 미치고, 혈장의 삼투압과 체내의 산-염기 균형 의 변화를 야기한다(Mroz et al., 1995). 돼지는 품 종간에도 고온 스트레스에 대한 내성과 민감도가 다 르기 때문에 생리적 반응도 다른 것으로 보고되고 있다(Waltz et al., 2013). 돼지의 hematological parameters는 성별, 나이, 품종 등의 생리학적 요 인뿐만 아니라 사료, 사육시스템, 기온, 습도 등 환 경학적 변화 등에 광범위하게 영향을 받는다(Wilson et al., 1972; Tumbleson & Scholl, 1981). 현재까 지 돼지에 있어서 고온 스트레스가 미치는 영향을 조사한 많은 연구들은 대부분이 통제된 조건하에서 조사가 이루어져(Patience et al., 2005), 자연상태 에서의 기후변화에 따른 생리적 변화는 보고가 미미 한 실정이다. 더욱이 우리나라처럼 계절성으로 여름 철에 고온다습한 환경을 갖는 조건에서는 실험적으 로 통제된 조건의 연구 이외에 혹서기간 동안의 기 후변화에 따른 생리적 변화에 대한 조사가 요구된 다.

    따라서, 본 연구는 한국에서 모계통으로 이용되는 Yorkshire 품종에 대해 장마 후의 폭염기후 하에서 돼지의 생리생화학적, 혈액학적 변화를 조사하여 기 초자료로 활용코자 실시하였다.

    II.재료 및 방법

    2.1.시험동물 및 시험설계

    본 시험에 이용된 공시동물은 73일령의 Yorkshire (평균체중 40.6±1.4 kg) 10두를 공시하여, 1.2 m ⅹ 1.2 m의 pen에 1두씩 임의 배치하였다. 시험기 간은 한국의 기온특성상 장마가 끝나는 7월 하순 (2013년 7월 24일)부터 폭염이 끝나는 9월 초순 (2013년 9월 4일)까지 6주간 진행되었다. 본 시험에 이용된 시험사료는 한국사양표준(2012)에 기준하여 영양소요구량을 충족하도록 배합하여 무제한 급여하 였다(Table 1).

    2.2.조사항목 및 조사방법

    2.2.1.온·습도 및 시료채취

    시험기간 동안 돈사 내 온도와 습도는 온·습도 자동측정기록계(174H, Testo, Germany)를 이용하 여 30분 간격으로 측정하였다. 측정한 온·습도 기 록으로 Dikmen & Hansen (2008)이 제시한 공식을 이용하여 열량지수(THI, Temperature and Humidity Index)를 산출하였다. 산출식은 다음과 같다.

    THI = (1.8×Tdb+32)−[(0.55−0.0055×RH) ×(1.8×Tdb−26.8)]

    where, Tdb = dry bulb temperature; RH = relative humidity

    2.2.2.성장성적 및 혈액채취

    체중과 사료섭취량은 이동식 전자저울을 이용하여 시험개시부터 종료시까지 매주 측정하였으며, 측정 치를 이용하여 일당증체량과 사료요구율을 산출하였 다. 혈액 샘플은 개시부터 종료까지 2주 간격으로 채취하였으며, 채취 당일 오전 8시에 사료를 급여한 후 11시에 혈액을 채취하였다. 일내변동(Daily variation) 조사를 위한 혈액 채취는 전체 시험기간 중 8월 중순(14 Aug, 2013)에 임의로 3두를 선발하 여 11시, 14시, 17시에 시간대별로 동일개체에서 실 시하여 분석에 이용하였다. 이때의 사료급여는 채취 전날 17시에 급여 이후 익일 모든 채혈이 끝날 때까 지 절식을 실시하였다.

    채취한 혈액의 일부는 채혈 직후 EDTA가 처리된 tube에 분주하여 혈구분석에 이용되었고, 남은 혈액 은 혈청분리 tube에 분주하여 원심분리(2,000ⅹg, 20 min, 4℃) 후 혈청을 분리하여 -80℃ 냉동고에 서 분석 때까지 보관하였다.

    2.2.3.혈청 pH, osmolality 및 전해질

    pH (AX 4030, Arkray, Japan), Osmolality (Fiske one-ten, FISKE, USA) 및 전해질 분석 (Modular analytics, Roche, Germany)은 혈청을 분리하여 녹십자 의료재단에 분석의뢰하였다.

    2.2.4.혈액학적 분석

    일반 혈액 검사(complete blood cell count, CBC)는 채혈 직후 자동혈구분석기(HEMAVET 950 FS, Drew scientific, UK)를 이용하여 분석하였으 며, 혈청 내 glucose, total cholesterol (T- CHO), total protein (T-PRO), triglyceride (TG), blood urea nitrogen (BUN)의 농도는 자동생화학 분석기 (Hitachi 7180, Tokyo, Japan)를 이용하여 분석하 였다.

    2.3.통계분석

    분석된 모든 결과는 통계프로그램 SPSS version 17.0을 이용하여 분석하였다. 분석치의 시험기간 동안의 변화는 repeated analysis of variance (repeated ANOVA)으로 분석하였으며, 시간대별 통계적 유의차는 유의수준은 0.05 이하에서 인정 되었다.

    III.결 과

    3.1.온·습도 변화

    돈사 내부의 온·습도는 돈사 내 두 지점에서 30 분 간격으로 측정한 값의 평균으로 계산하였다. 시 험기간 중 최고온도는 4주에 32.1℃로 관찰되었으 며, 돈사 내부의 평균온도와 열량지수는 3주(28. 6℃, 81.7 THI)에 가장 높은 것으로 관찰되었다 (Fig. 1A.). 돈사 내부의 일내 열량지수 변화를 조 사한 결과, 최저 열량지수는 06시에, 최고 열량지수 는 14시에 나타나는 것으로 관찰되었다(Fig. 1B.). 본 연구에서는 평균온도와 열량지수가 가장 높게 관 찰된 시험 3주에 가장 극심한 고온 스트레스를 받은 것으로 판단하였다.

    3.2.일당증체량 및 사료요구율

    시험기간 동안의 일당증체량 및 사료요구율을 Fig. 2에 나타내었다. 개시부터 3주차까지 일당증체 량은 증가하는 것으로 관찰되었으나, 3주 이후부터 시험 종료시까지 감소하는 것으로 나타났다(P < 0.05). 사료요구율 또한 일당증체량과 동일한 양상 으로 가장 심한 고온 스트레스를 받은 3주 이후부터 높아지는 경향을 나타내었으나, 유의적인 차이는 관 찰되지 않았다.

    3.3.혈액의 생리학적 변화

    혹서기 동안의 혈액의 생리학적 변화를 조사한 결 과는 Table 2에 나타내었다. 전체 시험기간 동안 pH는 7.95~8.1, 삼투압은 303~313 mOsm/kgH2O 의 수준을 유지하였으며, 환경온도 변화에 따른 유 의적인 차이는 관찰되지 않았다. 혈중 전해질 농도 의 변화는 마그네슘 이온의 경우 고온환경에서 유의 적인 차이를 나타내지 않았으나, 나트륨(P<0.01)과 염소이온(P<0.05)의 경우에는 시험 종료시점인 6주 에 유의적으로 가장 높은 혈중농도를 나타내었다. 칼륨의 경우에는 유의적인 차이는 아니지만 시험 6 주에 다른 주에 비하여 다소 낮아지는 경향이었다 (P=0.078). 혈액의 생리학적 특성변화에서 일내변동 은 모든 항목에서 유의한 결과를 보이지 않았다 (Table 3).

    3.4.혈액학적 변화

    3.4.1.혈구분석

    고온 환경하에서 CBC parameters 변화를 분석 한 결과는 Table 4에 나타내었다. Leukocytes 중 에서 호중구(NE, p<0.05)와 단핵구(MO, P=0.057) 가 시험 6주에 증가하는 것으로 관찰되었으나, 전 체 백혈구수준(WBC)은 유의적인 차이가 관찰되지 않았다. 호중구와 림프구의 비율로 나타낸 N:L ratio는 시험 6주에 유의적으로 증가하였다(p<0.05). Erythrocytes의 profiles의 변화에서는 헤모글로빈 (Hb, p <0.05) 농도와 평균 적혈구 혈색소 농도 (MCHC, p<0.01)가 시험 4주와 6주에 유의적으로 감소하는 것으로 관찰되었으며, 혈소판(PLT)과 thrombocytes 평균 혈구 용적(MPV)도 시험 4주와 6주에 유의적으로 감소하는 것으로 관찰되었다 (P<0.05).

    3.4.2.혈액생화학 분석

    혹서기 6주간의 혈액생화학 성분의 변화를 2주 간격으로 측정한 결과는 Table 5에 나타내었다. 혈 중 TG를 제외한 모든 측정항목에서 시간경과에 따 른 유의적인 차이가 관찰되었다. 혈중 T-CHO (P<0.01), T-PRO (P<0.001), BUN (P<0.01)의 농 도는 4주 이후에 유의적으로 증가하는 것으로 관찰 되었으나, 이와 반대로 혈중 glucose (P<0.05)의 농 도는 온도가 낮아지는 6주차에 유의적인 감소를 나 타내었다. 혈액생화학성분의 일내변동을 조사한 결 과에서는 BUN만이 유의적인 차이를 가지는 것으로 나타났다(P<0.05). 혈중 BUN의 농도는 14시에 16.7 mg/dL로 가장 높은 수치를 기록하였으며, 17시에는 감소하는 것으로 나타났다(Table 6).

    IV.고 찰

    육성기 돼지의 일당증체량은 일령이 증가함에 따 라 함께 증가한다(De Haer et al., 1993). 본 연구 에서 3주 이후의 일당증체량 감소는 고온 스트레스 로 인해 증체량이 감소한 결과로 해석된다. 고온환 경하에서 사료섭취량 감소와 증체량 저하는 잘 알려 진 사실이다(White et al., 2008). 따라서, 3주 이 후 증체량이 유의적으로 감소한 것은 본 연구에서 공시동물이 충분한 고온 스트레스 환경에 노출된 것 으로 판단할 수 있다.

    돼지에 있어서 고온 스트레스는 체온 조절을 위하 여 호흡수를 증가시킨다(Lopez et al., 1991). 고온 환경에서 체온조절을 위한 호흡량의 증가는 폐의 환 기를 촉진하여 폐기포 pCO2를 저하시키고, 혈중 HCO3-와 pCO2의 농도 변화에 따라 pH가 증가되는 respiratory alkalosis를 유발한다(Rose, 1989). 본 연구에서는 환경온도 변화에 따라 혈액 내 pH의 변 화가 관찰되지 않았는데, 이는 두 가지 이유로 해석 될 수 있다. 첫 번째로, 정맥혈은 폐순환 후에 많은 조직과 기관으로 흐르면서 혈액성상이 변화한다. 따 라서, 체내의 산-염기 균형 조사는 정맥혈보다 동맥 혈에서 측정하는 것이 더 정밀하다 (Guyton, 1986; Augustinsson & Forslid, 1989). 본 연구에서 분석 된 혈액은 경정맥으로부터 채혈된 혈액으로써, 체내 순환과정 중에 환경온도의 영향이 상쇄되었을 가능 성이 있다. 두 번째로는, 실험조건상 pH가 유지되었 을 가능성이 있다. Patience et al.(2005)의 보고에 의하면 일주기 열 스트레스(diurnal heat stress) 조건에서 고온 스트레스를 받은 돼지는 시원해지는 저녁과 새벽시간 동안 호흡의 정상화로 고온 스트레 스의 영향이 회복되는 것으로 보고하고 있다. 본 연 구에서도 이들의 보고와 동일한 양상의 결과를 나타 내고 있다.

    혈장의 삼투압은 물에 용해되는 용질(주로 Na+)의 비율에 의해 결정된다(Gürtler et al., 1989). Rose (1989)에 의하면 혈장의 삼투압은 시상하부에서 osmoreceptors (혈장삼투압수용기)에 의해 조절된 다. 혈장의 삼투압이 증가하게 되면, 시상하부에 있 는 osmoreceptors가 신경분비세포에 신호를 전달하 여 배뇨량을 감소시킨다. 또한, 동시에 음수중추를 자극하여 갈증을 느끼게 함으로써 음수량을 증가시 킨다. 일반적으로 음수량은 고온 스트레스 환경하에 서 증가하는 것으로 보고되고 있다(Waltz et al., 2014). 본 연구의 결과에서는 나트륨과 염소이온의 농도가 시험 6주에 증가하였으나, 삼투압은 유의적 인 차이를 나타내지 않았다. 이는 고온 스트레스에 노출된 이후 증가된 혈장 내 나트륨의 증가 수준이 약 2.7% 내외로 삼투압에 영향을 미치지 않을 정도 의 수준으로 사료된다. 또한, osmoreceptors의 발 현량과 음수량을 측정하지는 않았지만 고온 환경하 에서 음수량 증가에 따른 항상성 조절에 의해 삼투 압이 유지될 가능성을 고려할 수 있다.

    고온 스트레스에 의한 혈액학적 변화는 돼지에 있 어서 환경변화에 대한 생리적 적응과 성장에 영향을 줄 수 있으므로 중요한 지표로 이용된다. 본 연구에 서 혈중 NE의 농도가 증가하였으며, N:L ratio의 수준도 증가하는 것으로 관찰되었다(P<0.05). N:L ratio는 동물에서 건강 위해요소(Health challenge) 의 지표로 이용되며, 높은 수준의 N:L ratio은 면역 체계의 저하를 반영한다(Widowski et al., 1989). 본 연구에서 시험 6주에 NE와 N:L ratio의 유의적 인 증가는 고온 스트레스가 면역력에 영향을 미치는 것을 시사한다. 한편, 혈구수준은 성장단계, 성별, 사육환경, 품종, 사료 등에 따라 다른 것으로 알려 져 있다(Tumbleson & Scholl, 1981; Friendship et al ., 1984). 고온 스트레스에 노출시킨 많은 연구들 사이에서도 일치하지 않는 결과들이 보고 되고 있다(Hyun et al., 2005; Chmielowiec- Korzeniowska et al., 2012; Waltz et al., 2014). Waltz et al(2013)의 보고에 의하면, 고온 환경이 WBC, RBC, Hb, HCT의 수준에 영향을 미치지 않 았으나, Waltz et al.(2014)의 또 다른 연구에서는 고온 스트레스가 혈액 내 RBC, Hb, MCV, MCHC, HCT, reticulocytes의 농도를 유의적인 수준으로 증가시키고, PLT의 수준은 감소시키는 것으로 보고 하였다. 본 연구결과에서는 이들의 연구와 일부 일 치하는 것(PLT)으로 나타났지만, 상반되는 결과(Hb, MCHC)도 관찰되었다. 본 연구에서 관찰된 혈구의 유의적인 변화는 한국의 혹서기간 동안 Yorkshire 품종에 대한 혈구변화의 의미를 가지며, 이들 성분 의 변화에 대한 고온 스트레스의 영향에 대해서는 향후 추가적인 연구가 필요하다.일반적으로 고온 환경하에서는 사료섭취량의 감소 에 기인하여 혈중 glucose의 농도는 저하된다. 본 연구의 결과에서도 시험 6주차에 유의적으로 혈중 glucose 농도가 감소하는 것으로 관찰되었으며, 이 는 Becker et al.(1992)Pearce et al.(2013)의 연구와 일치하는 결과를 나타낸다. 하지만 우리의 연구에서 고온 스트레스는 시험 3주에 받은 것으로 판단하였으나, 시험 6주에 glucose가 감소되는 결과 를 나타내었다. 이전의 수많은 연구들에서 고온 스 트레스 하에서의 혈중 glucose 농도에 대한 결과들 은 다양하게 보고되고 있다. 이는 고온 스트레스의 조건(정도, 급성 혹은 만성), 동물의 생리적 상태, 영양학적 조건 등에 의해 다른 것으로 보고되고 있 는데(Pearce et al., 2013), 이러한 원인에 대해서 는 아직 명확히 밝혀지지 않았다.

    혈액생화학성분 분석결과에서 환경온도의 변화에 따라 혈중 T-CHO, T-PRO, BUN의 농도가 증가하 였다(Table 5). 고온 스트레스는 영양소 흡수 후에 단백질 대사에 영향을 미치며, 이는 다른 동물에서 도 동일한 결과가 보고되고 있다(Close et al., 1971; Christon, 1988; Lu et al., 2007; Wheelock et al., 2010). 고온 환경에서 체중의 변 화는 골격근 이화작용의 지표로 나타나는 혈중 Nt-methylhistidine (NtMH)의 농도로 증명될 수 있는데(Yoshizawa et al., 1997), Pearce et al(2013)의 연구에서 고온환경에 노출된 돼지의 혈 중 NtMH의 농도가 유의적으로 증가된다고 보고하 였다. 본 연구에서 NtMH에 대한 농도는 측정하지 않았지만, 고온에 노출된 이후에 일당증체량이 감소 하는 결과(Fig. 2)는 근육의 이화작용이 증가되었음 을 시사한다. 혈중 BUN 농도는 아미노산 이용율의 지표로 사용되며(Eggum, 1970), 동물의 체내 단백 질 대사와 사료 내 질소함량과 관련된다(Hahn et al., 1995). 많은 연구자들은 사료 내 라이신:에너지 비율의 감소, 라이신 흡수율의 저하 등에 의해 혈중 BUN의 농도가 증가하는 것으로 보고하고 있다 (Smith et al., 1999; Jin et al., 2010). 본 연구의 결과에서 T-PRO과 BUN의 혈중 농도가 증가하는 것은 고온 스트레스에 의해 영양소 이용효율이 저하 되고, 근육의 이화작용이 촉진되어 나타나는 결과로 사료된다. 혈액생화학성분의 일내변동을 조사한 결 과에서는, 열량지수가 높은 14시에 BUN만이 유의적 인 차이를 나타내며 증가하는 것으로 관찰되었는데 (Table 6, P<0.05), 이와 같은 결과는 일내 온도가 가장 높아지는 오후에 라이신의 이용효율이 저하되 는 것으로 판단된다.

    본 연구에서는 한국의 혹서기간 동안 고온 스트 레스에 노출된 Yorkshire 품종의 혈액 내 생리적, 혈액학적 parameters의 변화를 관찰하였다. 고온 스트레스가 이러한 변화들에 대하여 어떠한 체내 메커니즘에 영향을 미치는지에 대해서는 향후 연구 가 필요할 것으로 사료되며, 본 연구에서 제시하는 결과들은 한국에서 혹서기 동안 돼지 생산성 저하 를 예방하기 위한 영양학적, 생리생화학적 방법을 개발하는 데에 기초자료로 활용될 수 있을 것으로 사료된다.

    V.감사의 글

    본 논문은 농촌진흥청 연구사업(과제번호: PJ00 997102)의 지원에 의해 이루어진 것임. 본 연구는 2014-2015년도 농촌진흥청 국립 축산과학원 박사후 연수과정 지원사업에 의해 이루어진 것임.

    Figure

    JALS-49-103_F1.gif

    Change of the temperature and THI in pigsty during entire experimental periods (A, upper), and daily variation of the temperature and THI at highest temperature day (B, below). THI (Temperature -Humidity Index) were calculated as following equation: (1.8×Tdb+32)−[(0.55−0.0055×RH)×(1.8×Tdb−26.8)]. (A) Closed bars are average temperature and opened bars are maximum temperature (℃). Triangle lines present the THI. (B) Closed bars are temperature (℃), and continuative line is the THI

    JALS-49-103_F2.gif

    Changes of average daily gain (ADG) and feed conversion ratio (FCR) at high ambient temperature. Closed bars are ADG and continuative line is FCR. Data are mean and bars are standard error. a,bMeans without common letter differ(p<0.05)

    Table

    Ingredients and chemical composition of the experimental diets

    1)Supplied per kg diet: Vit. A, 2,000,000IU, Vit. D3 400,000 IU, Vit. E 250IU, Vit. K3 100mg, Vit. B1 97 mg, Vit. B2 300 mg, Vit. B6 200 mg, Vit. B12 1.2 mg, Nicotinic acid 2,000 mg, Calcium pantothenate 1,000 mg, Folic acid 200 mg, d-biotin 20 mg, Choline chloride 25,000 mg, Manganese 12,000 mg, Zinc 15,000 mg, Iron 4,000 mg, Iodine 250 mg, Cobalt 100 mg, Magnesium 2,000 mg, B.H.T. 5,000 mg

    Changes of pH, osmolality, and electrolytes at high ambient temperature

    1)SEM, standard error mean
    2)R-ANOVA, repeated ANOVA; N.S., non-significant
    Asterisk indicates significant difference compared to initial in a same row (*, p<0.05; **, p<0.01)

    Daily variation of pH, osmolality, and electrolytes within highest temperature day

    1)CV, coefficient of variation
    2)SEM, standard error mean
    3)R-ANOVA, repeated ANOVA; N.S., non-significant

    Changes of hematological profiles at high ambient temperature

    1)WBC, white blood cell; NE, neutrophil; LY, lymphocyte; MO, monocyte; EO, eosinophil; BA, basophil; N:L ratio, neutrophil to lymphocyte ratio; RBC, red blood cell; Hb, hemoglobin; HCT, hematocrit; MCV, mean corpuscular hemoglobin; MCHC, mean corpuscular hemoglobin concentration; RDW, red cell distribution width; PLT, platelet; MPV, mean corpuscular volume
    2)SEM, standard error mean
    3)R-ANOVA, repeated ANOVA; N.S., non-significant
    Superscript or asterisk indicates tendencies or significant difference compared to initial in a same row (t, 0.05<p<0.1; *, p<0.05; **, P<0.01).

    Changes of blood biochemical components at high ambient temperature

    1)T-CHO, total cholesterol, T-PRO, total protein, TG, triglyceride, BUN, blood urea nitrogen
    2)SEM, standard error means
    3)R-ANOVA, repeated ANOVA; N.S., non-significant
    Superscript or asterisk indicates tendencies or significant difference compared to initial in a same row (t, 0.05<P<0.1; *, P<0.05; **, P<0.01).

    Daily variation of blood biochemical components within highest temperature day

    1)T-CHO, total cholesterol, T-PRO, total protein, TG, triglyceride, BUN, blood urea nitrogen
    2)CV, coefficient of variation
    3)SEM, standard error mean
    4)R-ANOVA, repeated ANOVA; N.S., non-significant
    Asterisk indicates significant difference compared to 11:00 in a same row (*, P<0.05).

    Reference

    1. Augustinsson O , Forslid A (1989) Aldosterone secretion during acute respiratory acidosis and NH4Cl-induced metabolic acidosis in the goat , Acta. Physiol. Scand, Vol.136; pp.339-345
    2. Becker BA , Knight CD , Buonomo FC , Jesse GW , Hedrick HB , Baile CA (1992) Effect of a hot environment on performance, carcass characteristics, and blood hormones and metabolites of pigs treated with porcine somatotropin , J. Anim. Sci, Vol.70; pp.2732-2740
    3. Chmielowiec-Korzeniowska A , Tymczyna L , Babicz M (2012) Assessment of selected parameters of biochemistry, hematology, immunology and production of pigs fattened in different seasons , Arch. Tierz, Vol.55; pp.469-479
    4. Christon R (1988) The effect of tropical ambient temperature on growth and metabolism in pigs , J. Anim. Sci, Vol.66; pp.3112-3123
    5. Close WH , Mount LE , Start IB (1971) The influence of environmental temperature and plane of nutrition on heat losses from groups of growing pigs , Anim. Prod, Vol.13; pp.285-294
    6. De Haer LCM , Luiting P , Aarts HLM (1993) Relations among individual (residual) feed intake, growth performance and feed intake pattern of growing pigs in group housing , Livest. Prod. Sci, Vol.36; pp.233-253
    7. Dikmen S , Hansen PJ (2008) Is the temperature-humidity index the best indicator of heat stress in lactating dairy cows in a subtropical environment , J. Dairy Sci, Vol.92; pp.109-116
    8. Eggum BO (1970) Blood urea measurement as a technique for assessing protein quality , Br. J. Nutr, Vol.24; pp.983-988
    9. Friendship RM , Lumsden JH , McMillan I , Wilson MR (1984) Hematology and biochemistry reference values for Ontari swine , Can. J. Comp. Med, Vol.48; pp.390-393
    10. Gürtler H , Ketz HA , Kolb E , Schröder L , Seidel H (1989) The physiology of body fluids , In Lehrbuch der Physiologie der Haustiere, pp.370-403
    11. Guyton AC (1986) Textbook of Medical Physiology, W. B. Saunders Co,
    12. Hahn JD , Biehl RR , Baker DH (1995) Ideal digestible lysine levels for early and late finishing swine , J. Anim. Sci, Vol.73; pp.773-784
    13. Hyun Y , Ellis M , Curtis SE , Johnson RW (2005) Environmental temperature. space allowance. and regrouping. Additive effects of multiple concurrent stressors in growing pigs , J. Swine Health Prod, Vol.13; pp.131-138
    14. Jin YH , Oh KK , Piao LG , Jang SK , Choi YH , Heo PS , Jang YD , Kim YY (2010) Effect of dietary lysine restriction and energy density on performance, nutrient digestibility and meat quality in finishing pigs , Asian-Aust J. Anim. Sci, Vol.23; pp.1213-1220
    15. Lopez J , Jesse GW , Becker BA , Ellersieck MR (1991) Effect of temperature on the performance of finishing swine: effects of a hot, diurnal temperature on average daily gain, feedintake and feed efficiency , J. Anim. Sci, Vol.69; pp.1843-1849
    16. Lu Q , Wen J , Zhang H (2007) Effect of chronic heat exposure on fat deposition and meat quality In two genetic types of chicken , Poult. Sci, Vol.86; pp.1059-1064
    17. Mroz Z , Jongbloed AW , Lenis NP , Vreman K (1995) Water in pig nutrition: Physiology, allowances and environmental implications , Nutr. Res. Rev, Vol.8; pp.137-164
    18. Patience JF , Umboh JF , Chaplin RK , Nyachoti CM (2005) Nutritional and physiological responses of growing pigs exposed to a diurnal pattern of heat stress , Livest. Prod. Sci, Vol.96; pp.205-214
    19. Pearce SC , Gabler NK , Ross JW , Escobar J , Patience JF , Rhoads RP , Baumgard LH (2013) The effects of heat stress and plane of nutrition on metabolism in growing pig , J. Anim. Sci, Vol.91; pp.2108-2118
    20. Rose BD (1989) Clinical physiology of acid-base and electrolyte disorders, McGraw-Hill,
    21. Smith JW , Tokach MD , Nelssen JL , Goodband RD (1999) Effects of lysine:calorie ratio on growth performance of 10- to 25-kilogram pigs , J. Anim. Sci, Vol.77; pp.3000-3006
    22. St-Pierre NR , Cobanov B , Schnitkey G (2003) Economic Losses from Heat Stress by US Livestock Industries , J. Dairy Sci, Vol.86; pp.E52-E77
    23. Leman AD (1981) Diseases of swine, Iowa State University Press, pp.27-40
    24. Waltz X , Baillot M , Connes P , Bocage B , Renaudeau D (2014) Effects of hydration level and heat stress on thermoregulatory responses, hematological and blood rheological properties in growing pigs , PLOS, Vol.9; pp.-e102537
    25. Waltz X , Baillot M , Connes P , Gourdine JL , Philibert L , Beltan E , Chalabi T , Renaudeau D (2013) Effect of heat stress on blood rheology in different pigs breeds , Clin. Hemorheol. Microcirc,
    26. Wheelock JB , Rhoads RP , VanBaale MJ , Sanders SR , Baumgard LH (2010) Effects of heat stress on energetic metabolism in lactating Holstein cows , J. Dairy Sci, Vol.93; pp.644-655
    27. White HM , Richert BT , Schinckel AP , Burgess JR , Donkin SS , Latour MA (2008) Effects of temperature stress on growth performance and bacon quality in grow-finish pigs housed at two densities , J. Anim. Sci, Vol.86; pp.1789-1798
    28. Widowski TM , Curtis SE , Graves CN (1989) The neutrophil:lymphocyte ratio in pigs fed cortisol , Can. J. Anim. Sci, Vol.69; pp.501-504
    29. Wilson GDA , Harvey DG , Sbook CR (1972) A review of factors affecting blood biochemistry in the pig , Br. Vet. J, Vol.128; pp.596-609
    30. Yoshizawa F , Nagasawa T , Nishizawa N , Funabiki R (1997) Protein synthesis and degradation change rapidly in response to food intake in muscle of food-deprived mice , J. Nutr, Vol.127; pp.1156-1159
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